1、DNA產量低或者純度不高

原因分析：漂洗液中沒有加無水乙醇

建議解決方法：第一次實驗時，在漂洗液中加入指定量的無水乙醇。

原因分析：試劑盒儲存在非最佳條件

建議解決方法：試劑盒存放在室溫（15℃-20℃）。

原因分析|：使用了非最佳的洗脫液

建議解決方法：使用本試劑盒配套的洗脫液。

原因分析：試劑和回收液沒有充分混勻

建議解決方法：加入每個試劑后都要充分混勻。

原因分析：使用的結合液不足

建議解決方法：確保回收液體積和結合液的比例是1：5。

原因分析：洗脫不完全

建議解決方法：使用2次洗脫緩沖液洗脫，合并兩次洗脫液。

原因分析：起始的處理材料中DNA含量太低

建議解決方法：加大處理量，但注意不要少于30ul。

原因分析：回收的片段小于100bp或者大于10kb

建議解決方法：片段小于100bp或者大于10kb回收效率都會迅速降低，可嘗試提高起始處理量。

2、DNA下游酶切不能切開或者酶切不完全

原因分析：緩沖液或者試劑暴露于減少它們有效性的條件下

建議解決方法：儲存在室溫（15℃-20℃）。每次用完后立刻蓋緊蓋子，以免溶液蒸發、pH改變和污染。

原因分析：乙醇抑制了酶切反應

建議解決方法：盡量除去漂洗液，空氣中晾幾分鐘，讓殘留乙醇揮發。

3、洗脫液中不含DNA

原因分析：一些硅基質膜成分一起洗脫下來，抑制了酶切反應

建議解決方法：將洗脫的DNA溶液13000rpm再離心一分鐘，小心取上清使用。

原因分析：在初始處理材料中沒有PCR產物

建議解決方法：開始回收前，用瓊脂糖凝膠/EB電泳檢測PCR產物。

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